Sabtu, 19 Desember 2015

Laporan Fisiologi Ternak tentang Darah



LAPORAN AKHIR
PRAKTIKUM FISIOLOGI TERNAK
DARAH

OLEH :
KELAS E
KELOMPOK 1
ALISA YANUAR                             200110140084
RANDY ISWANSYAH                    200110140086
MUHAMMAD RIFALDI                 200110140186
FARID ARDIANTO                         200110140286
NADYA ROBIATUL A                   200110140295
TIARA ANDAMSURI                      200110140398


TANGGAL PRAKTIKUM : 21 dan 28 OKTOBER 2015

LABORATORIUM FISIOLOGI TERNAK DAN BIOKIMIA
FAKULTAS PETERNAKAN
UNIVERSITAS PADJADJARAN
SUMEDANG
2015




RUPA DARAH MAKROSKOPIK DAN MIKROSKOPIK SEBELUM DAN SESUDAH HEMOLISIS DAN MENENTUKAN TAHANAN OSMOTIK SEL-SEL DARAH MERAH
I
ALAT, BAHAN DAN PROSEDUR KERJA
1.1     ALAT
1.1.1        Rupa Darah Makroskopik Dan Mikroskopik Sebelum Dan Sesudah Hemolisis
1.      Tabung reaksi                   3 buah
2.      Pipet tetes                                    3 buah
3.      Gelas objek                      3 buah
4.      Mikroskop                        1 buah
5.      Cover glass                       3 buah
1.1.2        Menentukan Tahanan Osmotic Sel-Sel Darah Merah
1.      Tabung reaksi                   9 buah
2.      Rak tabung                       1 buah
3.      Pipet tetes 1 ml                5 buah
4.      Gelas objek                      5 buah
5.      Mikroskop                        1 buah
6.      Cover glass                       5 buah
1.1.3        Penentuan Waktu Pendarahan
1.      Jarum franke                    1 buah
2.      Kapas                               secukupnya
3.      Kertas                               secukupnya
4.      Stopwatch                        1 buah
1.1.4        Penentuan Waktu Beku Darah
1.      Jarum franke                    1 buah
2.      Kapas                               secupuknya
3.      Mikro kapiler  biru           1 buah
4.      Stopwatch                         1 buah
1.1.5        Penentuan kadar hemoglobin
1.      Hemometer ahli               1 set
2.      Batang pengaduk             1 buah
3.      Pipet tetes                        1 buah
4.      Kertas hidup                    1 buah
5.      Buku standart tallquist    1 buah
Adam
1.1.6        Penentuan nilai hematokrit
1.      Mikro kapiler merah     1 buah
2.      Sentifuge                       1 buah
3.      Kertas standard ukur     1 buah
Mikro hamatokrit
1.1.7        Menghitung Jumlah Eritrosit (Sel Darah Merah)
1.      Haemocytometer          1 set
2.      Kertas hisap                  1 buah
3.      Kapas                            secukupnya
4.      Mikroskop                    1 buah
5.      Batang pengaduk         1 buah
6.      Pipet tetes                     2 buah
7.      Kamar hitung                1 buah
1.1.8        Menghitung Jumlah Leukosit (Sel Darah Putih)
1.      Haemocytometer         1 set
2.      Kapas hisap                 1 buah
3.      Kapas                          secukupnya
4.      Mikroskop                   1 buah
5.      Pipet tetes                   2 buah
6.      Batang pengaduk        1 buah
7.      Kamar hitung              1 buah
Improved neubauer
1.2     BAHAN
1.2.1        Rupa Darah Makroskopik Dan Mikroskopik Sebelum Dan Sesudah Hemolisis
1.      Darah                               secukupnya
2.      Aquadest                          2 cc
3.      NaCl pekat (3%)              2 cc
1.2.2        Menentukan Tahanan Osmetik Sel-Sel Darah Merah
1.      Darah domba                   secukupnya
2.      Aquadest/ NaCl 0 %        secukupnya
3.      Larutan NaCl 3%             secukupnya
4.      Larutan NaCl 0,5 %         secukupnya
5.      Larutan NaCl 0,9 %         secukupnya
6.      Larutan NaCl 1 %            secukupnya
7.       Gelas objek                     5 buah
8.       Mikroskop                       1 buah
9.       Pipet tetes                       5 buah
1.2.3        Penentuan Waktu Perdarahan
Sampel darah               secukupnya
1.2.4        Penentuan Waktu Beku Darah
Sampel darah               secukupnya
1.2.5        Penentuan Kadar Hemoglobin
1.      Aquadest                          secukupnya
2.      HCl N/10                          secukupnya
3.       Darah domba                  secukupnya
1.2.6        Penentuan Nilai Hematokrit
1.      Sampel darah itik             secukupnya
1.2.7        Menghitung Jumlah Eritrosit (Sel Darah Merah)
1.      Darah ayam                    secukupnya
2.       Larutan hayem              secukupnya
1.2.8        Menghitung Jumlah Leukosit (Sel Darah Putih)
1.      Darah ayam                    secukupnya
2.      Larutan turk                   secukupnya


1.3          Prosedur Kerja
1.3.1        Rupa Darah Makroskopik Dan Mikroskopik Sebelum Dan Sesudah Hemolisis
a.    Langkah Pertama
1.      Sediakan 3 buah tabung reaksi A, B, dan C
2.      Tuangkan 5 tetes darah yang telah dibebaskan dari fibrin
3.      - Tabung A tambahkan 2 cc aquades
- Tabung B tambahkan 2 cc larutan NaCl pekat (3%)
- Tabung C biarkan seperti semula
4.      Tuangkan beberapa tetes dari setiap tabung A, B, C pada gelas objek
5.      Perhatikan pada cahaya tembus dengan dasar putih yang ada hurufnya
6.      Buat gambar tinjauan mikroskopiknya dari setiap objek A, B, dan C
  1. Langkah kedua
1.      Pada tabung A tambahkan 2 cc larutan NaCl (3%)
2.      Pada tabung B tambahkan 2 cc aquades
3.      a. Perhatikan kedua larutan tersebut, samakah sifat tembus cahayanya?  (ingat dalam volume yang sama antara aquades dan NaCl
b. Periksa keadaan tersebut di atas dengan jalan membuat preparat mikroskopik dari kedua tabung tersebut. Berubahkah darah itu secara mikroskopik dan makroskopik? Terangkan sejauh pengetahuan saudara!
c. Gambaran tinjauan mikroskopiknya
A………………(A + 5cc NaCl 3%)
            B………………(B + 5cc air)
1.3.2        Menentukan Tahanan Osmetik Sel-Sel Darah Merah
1.      Sediakan 5 buah tabung reaksi yang bersih dan kering
2.      Buat larutan NaCl 0% (aquadest), 0,5%, 0,9% , 1%, dan 3%.
3.      Isilah tiap-tiap tabung dengan larutan NaCl sebanyak 2 cc
4.      Teteskan 5 tetes darah yang tersedia ke dalam tiap tabung. Campurkanlah secara hati-hati. Biarkan selama 30 menit.
5.      Lihat dalam tabung yang mana mulai terlihat lapisan bening di lapisan atas.
6.      Teteskan pada gelas objek (lakukan dari setiap tabung) lihat di bawah mikroskop. Gambar dan beri penjelasan bila ada perubahan yang saudara lihat!
1.3.3        Penentuan Waktu Pendarahan
1.      Tusuklah ujung jari, catatlah dengan tepat waktu saat darah pertama keluar
2.      Isaplah tetesan darah dengan kertas isap sampai darah tidak keluar lagi.
3.      Catat waktunya
1.3.4        Penentuan Waktu Beku Darah
1.      Tusuklah ujung jari, tetes darah yang keluar dihisap ke dalam mikro kapiler yang tidak berheparin (pipet warna biru). Catatlah dengan tepat saat tetes darah masuk ke dalam kapiler!
2.      Genggamlah pipet mikrokapiler tadi dalam tangan saudara selama 5 menit. Setelah itu patahkan sedikit demi sedikit kapiler tersebut setiap 1 menit sampai terbentuk benang fibrin pada patahannya.
3.      Catat waktu pada saat terjadi benang fibirin. Waktu antara penggisapan darah ke dalam kapiler dan saat mulai terbentuk benang fibrin adalah waktu pembekuan.
1.3.5        Penentuan Kadar Hemoglobin
a.      Metode Hematin Asam Dengan Hemometer Sahli
1.      Bersihkan dan keringkan tabung hemometer
2.      Isi tabung hemometer dengan HCl N/10 sampai garis batas
3.      Isap darah sampel dengan pipet tetes hemometer samapai tanda garis 20mm3
4.      Tuangkan darah ke dalam tabung hemometer
5.      Campurkan (aduk) dengan alat pengaduk yang tersedia (darah akan terlihat coklat tua). Hal ini menunjukkan adanya hemolisis
6.      Tambahkan aquades tetes demi tetes sambil diaduk terus sampai warna sampel sama dengan warna standard
7.      Baca tinggi meniscus (permukaan) airan dalam tabung (satuan Hb=Gr%)
b.      Metode Tallquist
1.      Ambil contoh darah dengan pipet tetes
2.      Teteskan darah pada kertas isap yang telah tersdia, kemudian keringkan
3.      Bandingkan bercak/tetesan darah dengan warna standard yang ada pada buku standart tallquist adam
4.      Tentukan dan baca kadar Hb-nya
1.3.6        Penentuan Nilai Hematokrit
1.      Masukkan darah ke dalam kapiler hematokrit yang sudah mengandung anti koagulan (mikro kapiler warna merah). Tutuplah salah satu kapiler dengan kristoseal
2.      Kemudian kapiler yang sudah berisi darah tersebut dipusing menggunakan centrifuge 3000 rpm selama 15 menit.
3.      Setelah disentrifuge darah akan terpisah antara sel-sel darah dan plasmanya, bacalah volume sel-sel darah yang sudah terpisah dalam kapiler dengan alat pembaca mikrokapiler (micro capillary reader) Hitunglah nilai hematokrit
Nilai hematokrit =   

1.3.7        Menghitung Jumlah Eritrosit (Sel Darah Merah)
1.      Ambil darah dengan cara menusuk bagian dipilih (dari sayap ayam) Jangan lupa memakai desinfekan untuk membersihkan bagian yang akan diambil darahnya.
2.      Isaplah darah yang keluar dari luka, dengan pipet haemocytometer yang berbatu merah sampai tanda 1. Usahakan bekerja cepat jangan sampai darah membeku di dalam pipet.
3.      Encerkan darah dalam pipet dengan menghisap larutan hayem sampai tanda 101, dengan demikian darah tersebut telah diencerkan sebanyak 100 kali.
4.      Kocoklah pipet tersebut secara horizontal (lihat yang dicontohkan asisten). Hal ini untuk mencegah tercampurnya larutan hayem dalam kapiler.
5.      Biarkan larutan darah dalam larutan hayem ini selama 15 menit
6.      Buanglah beberapa tetes larutan dari dalam pipet
7.      Masukkan sampel darah ke dalam kamar hitung kemudian tutup dengan gelas penutup
8.      Lihat di bawah mikroskop, hitunglah butir-butir eritrosit yang berada di dalam kotak-kotak kecil. Untuk menghitung jumlah eritrosit hitunglah sebanyak 40 kotak.
1.3.8        Menghitung Jumlah Leukosit (Sel Darah Putih)
1.      Darah dihisap sampai tanda 1, kemudian diencerkan dengan larutan TURK sampai tanda 11. Ini berarti pengenceran 10 kali. Melakukan pengocokan (sama seperti pada eritrosit)
2.      Setelah dihomogenkan dengan memutar seperti angka delapan dan dibiarkan 15 menit, kemudian teteskan ke dalam kamar hitung
3.      Menghitung menggunakan mikroskop, butir-butir darah putih yang terdapat di dalam kotak-kotak besar, sebanyak 25 kotak.
4.      Catatan : lihat catatan cara menghitung eritrosit.
1.4        Tujuan
1.4.1        Rupa Darah Makroskopik Dan Mikroskopik Sebelum Dan Sesudah Hemolisis
a.      Untuk mengetahui sifat darah secara makroskopis saat sebelum dan sesudah hemolisis
b.      Untuk mengetahui rupa darah secara mikroskopis saat sebelum dan sesudah hemolisis
1.4.2        Menentukan Tahanan Osmetik Sel-Sel Darah Merah
Untuk mengetahui ketahan sel darah terhadap cairan NaCl dengan konsentrasi berbeda
1.4.3        Penentuan Waktu Pendarahan
untuk mengetahui waktu pendarahan yang diperlukan seseorang
1.4.4        Penentuan Waktu Beku Darah
Untuk mengetahui waktu pembekuan darah seseorang
1.4.5        Penentuan Kadar Hemoglobin
Untuk mengetahui kadar haemoglobin dalam darah
1.4.6        Penentuan Nilai Hematokrit
Untuk mengetahui nilai kadar eritrosit darah
1.4.7        Menghitung Jumlah Eritrosit (Sel Darah Merah)
Untuk mengetahui jumlah eritrosit dalam darah
1.4.8        Menghitung Jumlah Leukosit (Sel Darah Putih)
Untuk mengetahui jumlah leukosit dalam darah
II
HASIL PENGAMATAN

2.1  Rupa Darah Makroskopik dan Mikroskopik Sebelum dan Sesudah Hemolisis
Hasil pengamatan makroskopik darah
1.      Tabung A ( Darah + aquades 2 cc )
FISTER
 
Tembus cahaya --> Sel darah mengalami hemolisis
2.      Tabung B ( Darah + NaCl 3% 2 cc )
FISTER
 
Tidak tembus cahaya -->Sel darah mengalami  krenasi
3.      Tabung C ( Darah murni )
FISTER
 
Tidak tembus cahaya --> Sifat asli darah
Hasil pengamatan mikroskopik darah
1.      Tabung A ( darah + aquades 2 cc ) + NaCl 3% 2 cc
Sel darah mengalami hemolisis

 


2.      Tabung B (darah +NaCl 3% 2 cc ) + aquades 2 cc
Sel darah awalnya mengalami krenasi kemudian kembali mengembang seperti semula namun tidak sempurna
3.      Tabung C (darah)
Sel darah berbentuk bulat
2.2  Menentukan Tahanan Osmotik Sel-Sel Darah Merah
Gambar hasil pengamatan tahanan osmotik darah
1.      NaCl 0% + darah




Sel mengalami Hemolisis
 


 




2.      NaCl 0,6 %  + darah





Sel mengembang bulat
 

 




3.      NaCl 0,9 %  + darah





Sel normal
 

 




4.      NaCl 3%  + darah





Sel mengalami krenasi
 

 




2.3  Penentuan Kadar Hemoglobin (Hb), Nilai Hematokrit, Waktu Perdarahan, dan Waktu Pembekuan

No
Nama
Umur
Sex
BB (kg)
WP
WB
Hb Tq
1
Alisa
19
Pr
49
17“
5‘ 42“
50%
2
Andhika
19
Lk
73
17“
7‘
90%
3
Widya
19
Pr
65
20“
17‘
60%
4
Yuliani
20
Pr
47
32“
12‘
60%
5
Saiful
19
Lk
52
19“
6‘
70%
6
Wiendy
19
Pr
47
30“
4‘15“
40%
7
Dandi
20
Lk
50
13“
9‘31“
90%
8
Dedi
19
Lk
48
143“
5‘
40%
9
Saddam
19
Lk
56
37“
5‘
60%
10
Nurul
18
Pr
43
19"
5‘
70%
2.4  Penentuan Kadar Hemoglobin Dan Nilai Hematokrit (Itik Cihateup)
No
Hb Sahli (g/dl)
Hematokrit (%)
1
18,2
38
2
16,2
40,32
3
18,4
38,46
4
18,5
39
5
13,7
39,4
6
17,8
10
7
18,1
40
8
16,8
39,1
9
8,1
40,6
10
5,29
44










2.5  Menghitung Jumlah Eritrosit (Sel Darah Merah)
Hasil Perhitungan :

1
2
7
2
11
1
13
2
2
2
1
2
4
8
12
3
1
3
3
10
2
2
11
2
13
2
2
7
4
4
12
4
8
3
1
11
5
8
4
1

Jumlah total = 201 butir
Jumlah sel darah putih dalam 1mm3 = 100x100x201 = 2.010.000 butir




2.6  Menghitung Jumlah Leukosit (Sel Darah Putih)
Hasil Perhitungan :

8
7
10
7
12
14
10
14
24
22
16
20
19
16
10
12
19
16
19
19
11
7
21
13
10
14

Jumlah total = 370 butir
Jumlah sel darah putih dalam 1mm3 = 10x10x370 = 37000 butir








III
PEMBAHASAN
3.1         Rupa Darah Makroskopik dan Mikroskopik Sebelum dan Sesudah Hemolisis
Sifat darah secara makroskopis adalah tidak tembus cahaya, hal ini dikarenakan sifat dari eritrosit yang membawa sifat seperti cat penutup. Dalam percobaan terdapat tiga tabung darah yang diamati, yaitu tabung A degan sampel yang dicampur aquades 2 cc hasil pengamatannya adalah tembus cahaya, Tabung B dengan sampel darah dicampur NaCl 3% 2 cc hasil pengamatannya adalah tidak tembus cahaya, dan tabung C dengan sampel  darah yang tidak dicampurkan apapun. Sifat makroskopisnya adalah tidak tembus cahaya. 
Pada tabung C tidak tembus cahaya karena berisi darah murni, sesuai dengan literatur yang memang sifatnya tidak dapat tembus cahaya.  Pada tabung B juga tidak tembus cahaya karena secara mikroskopis sel darah mengalami krenasi atau berkerut karena sel mengalami hipertonik namun tidak rusak sehingga tetap tidak bisa ditembus cahaya. Berbeda hal dengan tabung A yang dapat tembus cahaya karena penambahan aquades tersebut menyebabkan sel darah terlalu mengalami hipotonis sehingga sel darah pecah, haemoglobin keluar dari sel atau dinamakan dengan hemolisis. Sehingga sifat optik darah menjadi tidak berlaku.
Pada perlakuan selanjutnya adalah untuk mengamati apakah bentuk sel kembali ke semula jika dicampurkan agar keadaan cairan di netralkan kembali. Pada tabung A yang telah dicampurkan dengan aquades yang menyebabkan keadaan hipotonis diberikan NaCl 3% untuk mengembalikan ke keadaan isotonik. Setelah diamati secara makroskopik sifat optik darah tetap tembus cahaya dan secara mikroskopik sel darah tetap rusak karena sudah mengalami hemolisis artinya sel tidak dapat kembali ke keadaan semula. Pada tabung B yang telah dicampurkan NaCl 3% sehingga mengalami keadaan hipertonik ditambahkan aquades supaya kembali isotonik. Setelah diamati secara makroskopis sifat optik darah tetap tidak tembus cahaya dan diamati secara mikroskopis ternyata bentuk sel yang awalnya krenasi mengalami perubahan menjadi sedikit mengembang hampir seperti kembali ke bentuk semula tetapi tidak bulat sempurna.
3.2         Menentukan Tahanan Osmotik Sel-Sel Darah Merah
Keseimbangan tubuh tercapai ketika tekanan osmotik cairan ekstraseluler sama dengan cairan intraseluler. Dalam percobaan terdapat 4 tabung darah yang diamati, yaitu merupakan larutan isotonis karena konsentrasinya sama dengan darah di dalam tubuh. Pada  darah yang dicampur dengan NaCl 0% hasilnya adalah bentuk sel darah sudah tidak terbentuk karena mengalami hemolisis karena pecah akibat terlalu mengembang dan yang dicampur dengan NaCl 0,6% bentuk sel darahnya adalah menggembung. Pada kedua fenomena tersebut terjadi karena sel mengalami hipotonis. Hipotonik adalah suatu keadaan dimana tekanan osmotik di luar sel lebih kecil dari pada di dalam sel dan kelebihan kandungan air di luar sel menyebabkan tekanan di dalam sel lebih besar. Sehingga untuk mencapai keseimbangan, air berlebih di luar sel masuk ke dalam sel sampai sel menggembung. Jika konsentrasi air terlalu banyak maka sel darah yang tidak dapat menampung lagi air akan pecah atau mengalami hemolisis dimana haemoglobin keluar dari sel dan terdapat dalam plasma. Pada darah yang dicampur dengan NaCl 3% bentuk sel darahnya mengkerut atau krenasi. Hal ini dikarenakan NaCl 3% merupakan larutan hipertonik. Hipertonis adalah suatu keadaan dimana tekanan osmotik di luar sel lebih besar dari dalam sel sehingga untuk mencapai keseimbangan, air dari dalam sel keluar sampai sel berkerut atau krenasi.
3.3         Penentuan Kadar Hemoglobin (Hb)
Hemoglobin merupakan protein yang terdapat dalam sel darah merah atau eritrosit, yang memberi  warna merah pada darah. Hemoglobin terdiri atas zat besi yang merupakan pembawa oksigen.  Sel darah merah di dalam tubuh dibuat dalam sum-sum tulang merah, limpa dan hati, yang kemudian akan beredar di dalam tubuh selama 14 - 15 hari, setelah itu mati (Syaifudin, 2006). Dalam praktikum ini menggunakan 2 Metode yaitu metode hematin asam dengan hernometer sahli dan metode tallquist.
Penetapan Hb metode Sahli didasarkan atas pembentukan hematin asam setelah darah ditambah dengan larutan HCl 0.1N kemudian diencerkan dengan aquadest. Pengukuran secara visual dengan mencocokkan warna larutan sampel dengan warna coklat muda atau batang gelas standar. Menurut (R. Gandasoebrata, 1989) kadar Hb normal Pada dewasa (Pria) : 13.2 - 17.3 gr/dl dan pada dewasa (Wanita)   : 11.7 - 15.5 gr/dl maka berdasarkan hasil pengamatan hanya ada 3 orang pria dewasa yang memiliki Hb yang normal dan 7 orang lainnya tidak memenuhi ketentuan, hal ini mungkin  karena warna yang terbentuk ini dibandingkan dengan warna standar dengan mata telanjang, penyinaran, ketajaman dan sebagainya sehingga dapat mempengaruhi hasil pembacaan pada saat mengamati.
Pada metode tallquist, prinsipnya adalah membandingkan darah asli dengan suatu skala warna yang bertingkat-tingkat mulai dari warna merah muda sampai warna merah tua.. Cara ini hanya mendapatkan kesan dari kadar hemoglobin saja, sebagai dasar diambil darah = 100% = 15,8 gr hemoglobin per 100 ml darah. Cara ini tidak teliti dan hanya dipergunakan untuk mengetahui kekurangan Hb secara kasar saja. Pada pengamatan hasil yang diperoleh tes hemoglobin darah manusia yang di bandingkan dengan standart tallquist adam menunjukkan darah dengan kadar hemoglobin (Hb) yang normal dengan kadar 50% dan 7,8 gms yang merupakan darah praktikan (Alisa).
3.4         Penentuan Nilai Hematokrit
Dari hasil pengamatan yang telah dilakukan diketahui bahwa nilai hematokrit dari masing-masing kelompok adalah :
1.      Kelompok 1    : 38%
2.      Kelompok 2    : 40,32%
3.      Kelompok 3    : 38,46%
4.      Kelompok 4    : 39%
5.      Kelompok 5    : 39,4%
6.      Kelompok 6    : 40%
7.      Kelompok 7    : 40%
8.      Kelompok 8    : 39,1%
9.      Kelompok 9    : 40,6%
10.  Kelompok 10  : 44%
Berdasarkan hasil tersebut maka dapat diketahui bahwa nilai hematokrit pada percobaan di atas tidak jauh berbeda dari nilai hematokrit normal, meskipun masih ada juga yang masih berbeda lumayan jauh. Hal ini sesuai dengan pendapat Frandson (1992), yang menyatakan bahwa nilai hematokrit normal pada laki-laki adalah 42% dan pada wanita 38%. Faktor-faktor yang mempengaruhi nilai hematokrit adalah jenis kelamin, spesies, jumlah sel darah merah dimana jumlah sel darah merah pada pria lebih banyak jika dibandingkan dengan wanita, apabila jumlah sel darah merah meningkat atau banyak maka jumlah nilai hematokrit juga akan mengalami peningkatan, aktivitas dan keadaan pagositosia. Hal ini sesuai dengan pendapat Frandson(1990), bahwa ketinggian tempat juga mempengaruhi nilai hematokrit, karena pada tempat yang tinggi seperti pegunungan kadar oksigen dalam udara berkurang sehingga oksigen yang masuk kedalam paru-paru berkurang, oleh karena itu supaya terjadi keseimbangan maka sumsum tulang belakang memproduksi sel-sel darah merah dalam jumlah yang banyak. Koagulasi dapat dicegah dengan penambahan kalium sitrat atau natrium sitrat yang menghilangkan garam kalsium (Schmidt, 1997).
3.5  Penentuan Waktu Perdarahan
Pemeriksaan waktu perdarahan ini untuk mengetahui lamanya tubuh untuk menghentikan perdarahan tiba-tiba. Pemeriksaan ini mengukur kemampuan hemostasis dan koagulasi, fungsi pembuluh kapiler dan trombosit. Menurut Guyton (1989) kisaran waktu pendarahan yang normal untuk manusia adalah 15-120 detik. Berdasarkan hasil pengamatan hampir semua orang memiliki waktu perdarahan yang normal karena berada dalam jangka waktu 15-120 detik hanya satu orang yang memiliki waktu perdarahan lebih singkat dari 15 detik yaitu 13 detik karena rentang waktunya juga tidak terlalu jauh kemungkinan orang tersebut memang memiliki kemampuan hemostasis yang lebih cepat.
3.6  Penentuan Waktu Pembekuan
Pemeriksaan waktu pembekuan darah ini  dihitung mulai saat darah keluar sampai pendarahan terhenti. Proses pembekuan ini akan berakhir jika benang-benang  fibrin telah terbentuk. Jadi kita menghitung waktu pada saat darah keluar hingga benang-benang fibrin terlihat. Darah normal membeku  dalam 4 – 8 menit (Aida,2006). Pada percobaan tersebut didapat waktu rata-rata pembekuan darah masing-masing individu  yaitu  4 – 8 menit hanya ada tiga orang yang memiliki waktu pembekuan yang lama  atau tidak sesuai yaitu 17 menit, 12 menit dan 9 menit 31 detik. Lamanya waktu pembekuan darah ini dipengaruhi oleh beberapa faktor antara lain, jumlah trombosit, ada tidaknya ion kalsium dalam darah, adanya enzim trombokinase, dan besar kecilnya pembuluh darah yang terluka atau rusak. Dalam pembekuan darah, trombokinase berfungsi untuk mengubah protrombin menjadi trombin dengan bantuan ion kalsium (Ca2+) dalam darah. Kemudian trombin akan mengubah fibrinogen menjadi fibrin. Dengan terbentuknya fibrin tersebut maka darah sudah menggumpal dan menutup luka sehingga darah berhenti keluar. Trombokinase tersebut hanya terbentuk apabila ada trombosit yang pecah atau rusak saja (Frandson, 1992).
3.7  Menghitung Jumlah Eritrosit (Sel Darah Merah)
Pada percobban ini praktikan akan menghitung jumlah eritrosit pada darah yam. Menghitung jumlah eritrosit yang terkandung dalam darah memang bukan suatu hal yang mudah karena sel-sel darah merah yang terkandung dalam darah berukuran sangat kecil sehingga dibutuhkan seperangkat alat yang dinamakan dengan Haemocytometer dengan bantuan mikroskop. Dalam proses penghitungan sel-sel darah merah dibutuhkan juga ketelitian dan konsisten dalam cara menghitung. Penghitungan sel-sel darah merah dihitung di dalam kamar hitung yang bersakala atau berukuran kecil dengan jumlah 40 buah.
Dari percobaan menghitung jumlah eritrosit dapat diketahui jumlah eritrosit sel darah ayam berjumlah 2.010.000 buah eritrosit. Hal ini menunjukkan bahwa jumlah eritrosit pada ayam tidak normal. Hal ini sesuai dengan pendapat Dellman dan Brown (1999) yang menyatakan bahwa jumlah normal eritrosit pada ayam betina dapat berada dibawah standar atau diatas standar. Jumlah normal eritrosit pada ayam adalah berkisar 2.300.000 – 4.000.000 buah eritrosit per millimeter kubik. Faktor yang mempengaruhi jumlah eritrosit adalah aktifitas ternak, umur dan bangsa. Hal ini sesuai dengan pendapat Anward (1981) bahwa aktifitas ternak mempengaruhi jumlah eritrosit, ternak yang dibiarkan lepas, eritrositnya akan berada dalam keadaan normal karena proses pembentukan darahnya berlangsung normal, sedangkan ternak yang terus menerus didalam kandang, jumlah eritrositnya akan lebih rendah karena tidak optimal, sehingga jumlah eritrositnya pun mengalami penurunan. Faktor lain yang mempengaruhi jumlah eritrositnya adalah status gizi dan jenis kelamin. Hal ini sesuai dengan pendapat Frandson (1996) yang menyatakan bahwa status gizi berpengaruh terhadap jumlah eritrosit pada ternak, karena secara tidak langsung bila gizi pakan yang diberikan tidak terjaga, maka eritrosit akan berada dalam keadaan menurun, jenis kelamin pun juga menentukan jumlah eritrosit dalam darah ayam, menurut penelitian yang telah dilakukan para ahli disimpulkan bahwa jumlah eritrosit pada ayam jantan lebih tinggi dari pada ayam betina.
Selain itu kesalahan juga dapat terjadi pada saat praktikum mulai dari kesalahan alat yang kurang baik, maupun dari  praktikan seperti kurang homogen saat pengocokan, kesalahan mata saat melihat alat dll. 
3.8  Menghitung Jumlah Leukosit (Sel Darah Putih)
Leukosit merupakan sel darah merah yang mengandung  inti atau disebut juga sel darah putih. Jumlah leukosit tergantung pada jenis tiap individu dan meningkat pada kondisi tertentu seperti stress, umur, serta aktivitas fisiologisnya. Leukosit mempunyai peranan dalam pertahanan seluler dan humoral organisme terhadap zat-zat asing. Sehingga apabila hewan mengandung leukosit yang banyak, maka dapat disimpulkan bahwa hewan tersebut sedang masa pengobatan dalam penyembuhan dari suatu infeksi penyakit. Sedangkan penurunan jumlah leukosit dapat terjadi karena keracunan bakteri, infeksi usus, maupun kehamilan. Banyak dan sedikitnya jumlah dari leukosit juga di pengaruhi oleh jumlah eritrosit pada suatu hewan. Menurut Bevelander dan Judith (1979). Besarnya jumlah leukosit selalu dipengaruhi oleh jumlah eritrosit, dimana jumlah leukosit selalu lebih rendah daripada jumlah eritosit
Dari praktikum yang dilakukan, yaitu menghitung jumlah leukosit menggunakan sampel darah ayam di dapatkan jumlah leukosit dalam 1mm3 adalah 37.000 butir. Menurut Dukes (1995) jumlah leukosit pada ayam berkisar antara 16.000-40.000 sel/mm3. Sehingga jumlah sel leukosit yang kami hitung normal.

IV
KESIMPULAN

Ø  Rupa darah secara maskroskopis dan mikroskopis darah dipengaruhi oleh  cairan yang masuk kedalam darah dan menyebabkan sel darah mengalami krenasi atau mengembang.
Ø  Bentuk sel darah merah dipengaruhi oleh tahanan osmotik sel-sel darah merah.
Ø  Jumlah hemoglobin darah itik Cihateup umur 4 bulan adalah 18,2 g/dl merupakan jumlah yang sedikit melebihi batas normal, sedangkan jumlah hemoglobin darah alisa (sample praktikan) adalah 50% dan 7,8 gms merupakan jumlah yang normal,
Ø  Rata-rata nilai hematokrit pada darah sampel dari kelompok 1-10 yang didapatkan merupakan nilai yang normal. Nilai yang didapat yaitu anta 38-44%
Ø  Dilihat dari data semua kelompok waktu perdarahan sampel yang ada adalah normal dan terdapat 3 sampel yang terlalu lama. Lamanya waktu pembekuan darah ini dipengaruhi oleh beberapa faktor antara lain, jumlah trombosit, ada tidaknya ion kalsium dalam darah, adanya enzim trombokinase, dan besar kecilnya pembuluh darah yang terluka atau rusak.
Ø  Rata-rata waktu beku darah sampel dari 10 kelompok adalah normal hanya beberapa sampel yang terlalu lama dan 1 sampel yang cepat.
Ø  Jumlah eritrosit sel darah ayam jantan berjumlah 2.010.000 sel/mm3 merupakan jumlah yang dibawah normal. Kesalahan dapat terjadi dari pemeliharaan maupun pada saat praktikum
Ø  Jumlah leukosit pada sampel ayam jantan adalah 37.000 sel/mm3 merupakan jumlah yang normal.



DAFTAR PUSTAKA

Adam, Syamsunir. 1992. Dasar-dasar mikrobiologi dan Parasitologi untuk Perawat .Jakarta: EGC
Aida, Yuniarti, 2006, Petunjuk Praktikum Fisiologi Hewan, Fakultas Biologi    UAJY,Yogyakarta.
Anward. 1981. Anatomi dan Fisiologi untuk Paramedis. Gramedia , Jakarta
Bavelender,G.A. dan A.R.Judith.1979.Dasar-dasar Histologi Edisi 8. Erlangga,    Jakarta
Dellman,H dan Brown. 1999. Avian Physiology. Terjemahan Hartono.        Universitas Indonesia press, Jakarta
Dukes,H.H.1995.The Phisiology of Domestic Animals.Constock Publishing            Associates,      New York
Frandson, R.D. 1992. Anatomi dan Fisiologi Ternak. Edisi keempat. Gadjah Mada            University Press. Yogyakarta
Gandosoebrata, R. 1969.  Penuntun Laboratorium Klinik . Jakarta : Dian Rakyat

Poedjiadi,anna.1994. Dasar-Dasar Biokimia.Jakarta :universitas Indonesia press

Schmid, K. and Friends. 1997. Animal Physiology: Adaptation and Environment.   USA:Cambridge University Press.
Soeharsono.2011.Fisiologi Ternak.Bandung :widya padjadjaran
Syaifudin. 2006, Anatomi Fisiologi Untuk Mahasiswa Keperawatan, Edisi 3,          Penerbit Buku            KewdsokteranEGC, Jakarta












Diposting oleh di

Tidak ada komentar:

Posting Komentar

Langganan: Posting Komentar (Atom)